【产品名称】
通用名称：布鲁氏菌检测试剂盒（实时荧光PCR法）
英文名称：Brucella Detection Kit (Real-Time PCR Method)
【包装规格】 25T/盒 & 50T/盒
【预期用途】
布鲁氏菌病（Brucellosis）是由布鲁氏菌（Brucella）引起的畜源性人畜共患传染病，在牛、羊、猪中常发生，患病家畜是人类布鲁氏菌病的主要传染源。近年来全国各地布鲁氏菌病疫情有上升的趋势，给畜牧业发展及人类身体健康带来极大的危害和威胁，造成巨大的经济损失和严重的公共卫生问题。布鲁氏菌检测试剂盒利用实时荧光PCR原理，主要用于布鲁氏菌的定性筛查检测。
【检验原理】
针对布鲁氏菌基因设计特异性引物和分子信标探针，在待检样本中含有布鲁氏菌DNA的情况下，PCR反应得以进行并释放荧光信号。利用仪器对PCR过程中相应荧光信号进行实时监测和输出，实现检测结果的定性分析。
【主要组成成份】
| 序号 | 组成 | 25T/盒 | 50T/盒 |
| 1 | 布鲁氏菌 PCR反应液 | 437.5 μL×1管 | 875 μL×1管 |
| 2 | 布鲁氏菌 混合酶液 | 62.5 μL×1管 | 125 μL×1管 |
| 3 | 布鲁氏菌 阴性对照 | 40 μL×1管 | 40 μL×1管 |
| 4 | 布鲁氏菌 阳性对照 | 40 μL×1管 | 40 μL×1管 |
| 5 | 说明书 | 1份 | 1份 |
注：阴性对照为不含布鲁氏菌的其它菌的混合物，阳性对照为灭活的布鲁氏菌。
【储存条件及有效期】避光-20℃以下保存，避免反复冻融，有效期12个月。
【适用仪器】ABI 系列、Bio-Rad系列、Agilent Stratagene MX系列、Roche LightCycler R480、Cepheid SmartCycler、Rotor-Gene系列、杭州博日系列等多通道实时荧光定量PCR仪。
【样本要求】
1. 如使用原始标本进行检测。标本（病人脑脊液、静脉血、关节液；病畜静脉血，乳汁；菌落，菌苔等）应为新鲜采集并使用双蒸灭菌水或灭菌生理盐水悬浮的原始标本。
2. 如需在增菌后进行PCR检测，则应使用选择性增菌液对原始标本进行增菌。
3. 标本收集后若不能立即检测，可置于2～8℃冷藏过夜保存；如需长期保存，标本应冻存于-20℃～-80℃。
【检验方法】
1. 试剂准备（试剂准备区）
（1）从冰箱中取出试剂盒, 从试剂盒中取出实验所需试剂，充分融化混匀并瞬时离心以去除管壁附着液体。
（2）核算当次实验所需要的反应数（n），并根据如下表所示反应体系计算当次实验所需要的各种试剂量。
n =阴性对照数（1T）+阳性对照数（1T）+误差预留量（1T）+样本数
| 单反液配制表(每份) | PCR反应液 | 17.5 μL |
| 混合酶液（Taq酶+UNG酶） | 2.5 μL |
(3)在无菌离心管中加入上述试剂，充分混匀后瞬时离心。按照20μL/管分装量将试剂分装至PCR反应管。
(4) 盖紧PCR反应管盖后将PCR反应管转移至样本处理区。剩余试剂放回-20℃以下冰箱冷冻保存。
2.样本准备（样本处理区）
用QIAGEN、Roche公司提取试剂盒提取DNA，具体操作按照其试剂盒说明书操。
3.加样
在上述制备好的PCR反应样本管中分别加入处理好的待测标本DNA各5 μl、终体积25 μl/管，盖好PCR反应盖混匀后瞬时低速离心，转移到PCR仪器上。阴性对照和阳性对照管则各加5 μL试剂盒自带的阴性对照或阳性对照品，终体积为25 μl/管，盖好PCR反应盖混匀后瞬时低速离心，转移到PCR仪器上。
4.PCR（PCR扩增区）
（1）取样本处理区准备好的PCR反应管，放置在实时荧光定量PCR仪样品槽相应位置，并记录放置顺序。
（2）按下表设置仪器核酸扩增相关参数进行PCR扩增。
| 反应体积 | 25 μL | 通道选择 | FAM通道采集布鲁氏菌荧光信号 |
| PCR 反应 条件 | 步骤 | 条件 | 循环数 |
| UNG处理 | 50℃：2分钟（min） | 1 | |
| 预变性 | 95℃：3分钟（min） | 1 | |
| 预扩增 | 95℃：5秒（s） | 5 | |
| 55℃：40秒（s） | |||
| PCR扩增 | 95℃：5秒（s） | 40 | |
| 55℃：40秒（s） （此阶段结束时采集荧光信号） |
注：ABI系列荧光PCR仪在设置时不选ROX校正，设置淬灭基团选择None。
【参考值（参考范围）】
1.试剂盒有效性判定：
（1）阳性对照：有典型S型扩增曲线或Ct值≤35。
（2）阴性对照：Ct值＞38或无Ct值，线形为直线或轻微斜线，无指数增长期。
2.标本结果判定：
（1）阳性：标本检测结果Ct值≤35或有明显指数增长期。
（2）可疑：标本检测结果Ct值在35～38范围内。此时应对标本进行重复检测，如重复实验结果Ct值仍在35～38范围内，有明显指数增长期，则判定为阳性，否则为阴性。
（3）阴性：标本检测结果Ct值＞38或无Ct值。
【检验结果的解释】
| 通道及检测结果 | 标本检测结果解释 |
| FAM | |
| 阴性（－） | 标本中未检出布鲁氏菌 |
| 阳性（＋） | 标本中检测出布鲁氏菌 |
【检验方法的局限性】
1. 当检测样本中被检核酸浓度含量低于本试剂盒的ZD检出限可能会发生假阴性的结果。
2. 本试剂盒仅供标本初步筛查使用，对于本试剂盒检测阳性结果应进一步使用培养法进行确诊。
【产品性能指标】 产品的ZD检出限为102CFU，产品CV值≤5%。
【注意事项】
1. 整个检测过程应严格按照本说明书要求分别在试剂准备区、样本处理区和PCR扩增区进行操作，各区实验服、仪器、耗材应独立使用，不能混用；实验用吸头采用带滤芯吸头；样本处理区应配有生物安全柜，样本处理在生物安全柜中进行操作；三个区应该配有紫外线杀菌装置。
2. 每次实验应该设置阴、阳性对照。
3. 为保证试剂不受标本污染，必须将混合酶液及PCR反应液保存于试剂准备区。
4. 试剂盒所有试剂在使用前应该在常温下充分融化混匀，并应瞬时离心。
5. 试剂盒内所配阴性和阳性对照在第一次使用前应全部转移至标本准备区，并单独存放。
6. 为防止荧光干扰，应避免裸手直接接触PCR反应管，并应避免在PCR反应管上进行任何标记。
7. 仪器扩增相关参数应按照本说明书相关要求进行设置；不同批号试剂不能混用。
8. ABI系列荧光定量PCR仪参数设置中不选ROX校正，淬灭基因选择None。
9. 实验过程中产品的废弃物应该进行无害化处理后方可丢弃。
